Флуоресцентная гибридизация in situ

Флуоресцентная гибридизация in situ (FISH, от англ. Fluorescence In Situ Hybridization) представляет собой метод визуализации и локализации специфических нуклеотидных последовательностей в клетках или тканях с использованием флуоресцентно меченых зондов. Метод основан на специфическом связывании одноцепочечной ДНК или РНК-зонды с комплементарными последовательностями в фиксированных биологических образцах, что позволяет выявлять генетические и структурные особенности на уровне отдельных клеток.


Принципы флуоресцентного зондирования

Специфичность зондов. Ключевым элементом метода является зонд — одноцепочечная нуклеиновая кислота, меченная флуорофором. Зонды могут быть ДНК, РНК или модифицированными олигонуклеотидами. Специфичность определяется комплементарностью последовательностей зонда и целевой ДНК или РНК.

Флуоресценция. Флуоресцентная метка поглощает свет на одной длине волны и испускает на другой. Различные флуорофоры позволяют одновременно детектировать несколько последовательностей. Наиболее часто используются флуоресцеин (FITC), родамин, Cy3 и Cy5, отличающиеся спектральными характеристиками и фотостабильностью.

Гибридизация. Процесс связывания зонда с целевой последовательностью включает денатурацию ДНК или РНК, при которой двойная спираль расплетается, и последующую гибридизацию с одноцепочечным зондом при оптимальных температуре и ионной силе. Специфические условия предотвращают неселективное связывание и обеспечивают высокую точность детекции.


Технологические этапы метода

  1. Фиксация образца. Образцы клеток или тканей фиксируются химическими агентами (формалин, этанол) для сохранения морфологии и стабилизации нуклеиновых кислот. Фиксация предотвращает деградацию ДНК/РНК и сохраняет доступность целевых последовательностей для гибридизации.

  2. Препарирование и денатурация. Для успешной гибридизации требуется денатурация двойной спирали ДНК, обычно с помощью высоких температур или щелочных растворов. Этот этап формирует одноцепочечные участки, доступные для зондов.

  3. Гибридизация с флуоресцентным зондом. Зонд добавляется к образцу в условиях, обеспечивающих специфическое связывание. Время и температура гибридизации подбираются индивидуально для каждой пары зонд–мишень.

  4. Смыв несвязавшихся зондов. После гибридизации образец промывается, чтобы удалить несвязавшиеся зонды. Строгие условия промывания уменьшают фоновую флуоресценцию и повышают контрастность изображения.

  5. Визуализация и анализ. Детекция проводится с использованием флуоресцентного микроскопа или конфокальной системы. Современные методы позволяют количественно оценивать экспрессию генов, локализацию хромосом и структурные перестройки.


Применение FISH

Цитогенетика. FISH широко используется для выявления численных и структурных аномалий хромосом, включая делеции, дупликации и транслокации. Метод обеспечивает высокую разрешающую способность на уровне отдельных клеток, что невозможно при классической кариотипизации.

Молекулярная диагностика. Применение FISH в онкологии позволяет детектировать специфические хромосомные перестройки, характерные для лейкозов, лимфом и твердых опухолей. Например, идентификация транслокации BCR-ABL в хроническом миелолейкозе осуществляется с помощью специфических флуоресцентных зондов.

Исследование экспрессии генов. FISH позволяет определять локализацию и количество транскриптов внутри клеток, включая изучение экспрессии микроРНК и других регуляторных РНК.

Микробиология. В экологических и клинических исследованиях FISH применяется для идентификации микроорганизмов в сложных сообществах без необходимости их культивирования.


Варианты и модификации метода

  • Мультицветная FISH (mFISH). Использование нескольких флуорофоров позволяет одновременно анализировать несколько хромосомных последовательностей, создавая «карту» хромосом.
  • Квантитативная FISH (Q-FISH). Метод обеспечивает количественное измерение числа копий специфических последовательностей и длины теломер.
  • РНК-FISH. Применяется для визуализации экспрессии генов на уровне отдельных транскриптов, включая выявление локализации мРНК в клетках и тканях.
  • Сигнал-усиленные методы. Используются цепочки ферментов или многофлуорофорные зонды для повышения чувствительности при детекции низкоэкспрессированных последовательностей.

Факторы, влияющие на результат

  • Качество и сохранность образца. Поврежденные или деградированные нуклеиновые кислоты снижают эффективность гибридизации.
  • Длина и состав зонда. Короткие зонды обеспечивают высокую точность, но могут обладать слабой связывающей способностью; длинные зонды повышают стабильность комплекса, но увеличивают риск неселективного связывания.
  • Температура и условия промывания. Оптимальная температура гибридизации и строгость промывания критически влияют на соотношение сигнал/фон.
  • Флуорофор и фотостабильность. Для длительной визуализации предпочтительны флуорофоры с высокой яркостью и устойчивостью к фотоблеканию.

FISH представляет собой интегративный метод, объединяющий основы молекулярной биологии, цитогенетики и флуоресцентной химии. Его точность и визуальная информативность делают метод незаменимым инструментом в современной генетической диагностике, исследовании структуры хромосом и анализе экспрессии генов на клеточном уровне.